Diplôme universitaire
La plus grande faculté de médecine du monde”
Présentation
Grâce à ce programme 100 % en ligne, vous améliorerez la qualité des services du laboratoire clinique grâce à des Analyses précises, fiables et efficaces, optimisant ainsi les processus de diagnostic’’
Le Laboratoire Clinique et Biomédical est un pilier fondamental du système de soins médicaux, car il permet de diagnostiquer des pathologies grâce à l'Analyse d'échantillons biologiques. C'est pourquoi les établissements de santé les plus prestigieux recherchent des spécialistes en Analyses Cliniques capables d'apporter précision et rigueur dans l'interprétation des résultats. Cependant, pour se démarquer dans cet environnement exigeant, il est essentiel de maîtriser les techniques les plus avancées dans des domaines tels que l'Immunoanalyse, la Biologie Moléculaire ou l'Étude Séminale.
Face à cette nécessité, TECH promeut un programme innovant en Analyses Cliniques, conçu pour intégrer les dernières tendances dans le domaine du laboratoire clinique. En ce sens, le programme couvre des disciplines essentielles telles que la biochimie, l'hématologie et la parasitologie, donnant accès à des méthodologies de pointe qui optimisent l'interprétation des tests diagnostiques. En outre, il approfondit le cadre réglementaire du secteur, garantissant ainsi que les spécialistes appliquent des critères de qualité, de précision et de sécurité dans leur travail quotidien.
Pour atteindre ces objectifs, ce programme est développé selon une méthodologie 100 % en ligne, ce qui permet aux professionnels de progresser à leur propre rythme depuis n'importe quel endroit disposant d'un accès à Internet. De même, son approche didactique est basée sur la méthode Relearning, une stratégie d'apprentissage qui renforce la rétention des connaissances grâce à la répétition systématique de concepts clés.
En guise de valeur ajoutée, le programme bénéficie de la participation d'un prestigieux Directeur Invité International qui dispensera 10 Masterclasses exclusives. Grâce à elles, les spécialistes pourront mettre à jour leurs compétences de manière globale et en accord avec les dernières données scientifiques.
Un Directeur Invité International renommé proposera 10 Masterclasses rigoureuses sur les dernières avancées en matière d'Analyses Cliniques’’
Ce Mastère spécialisé en Analyses Cliniques contient le programme scientifique le plus complet et le plus actualisé du marché. Ses caractéristiques sont les suivantes:
- Le développement d'études de cas présentées par des experts en Médecine
- Les contenus graphiques, schématiques et éminemment pratiques de l'ouvrage fournissent des informations scientifiques et pratiques sur les disciplines essentielles à la pratique professionnelle
- Exercices pratiques permettant de réaliser le processus d'auto-évaluation afin d'améliorer l’apprentissage
- Il met l'accent sur les méthodologies innovantes
- Cours théoriques, questions à l'expert, forums de discussion sur des sujets controversés et travail de réflexion individuel
- La possibilité d'accéder aux contenus depuis n'importe quel appareil fixe ou portable doté d'une connexion internet
Vous analyserez et interprétez les résultats d'examens tels que le profil lipidique, la glycémie, la numération globulaire et la coagulation afin de détecter des troubles métaboliques’’
Le corps enseignant comprend des professionnels de la Médecine, qui apportent leur expérience à ce programme, ainsi que des spécialistes reconnus issus de grandes sociétés et d'universités prestigieuses.
Son contenu multimédia, développé avec les dernières technologies éducatives, permettra au professionnel un apprentissage situé et contextuel, c'est-à-dire un environnement simulé qui fournira un étude immersif programmé pour s'entraîner dans des situations réelles.
La conception de ce programme est axée sur l'Apprentissage par les Problèmes, grâce auquel l’étudiant doit essayer de résoudre les différentes situations de la pratique professionnelle qui se présentent tout au long du programme académique. Pour ce faire, le professionnel aura l'aide d'un système vidéo interactif innovant créé par des experts reconnus.
Vous mettrez en œuvre des protocoles de contrôle qualité, d'étalonnage des équipements et de validation des résultats afin de garantir la précision et la fiabilité des diagnostics"
Vous maîtriserez les méthodologies modernes de préparation, de traitement et d'Analyse du sang et d'autres fluides biologiques à l'aide d'équipements de pointe"
Programme d'études
Ce programme universitaire très complet couvre les normes et réglementations du laboratoire d'Analyses Cliniques, ce qui permettra au professionnel de garantir la qualité et la sécurité dans la manipulation des échantillons biologiques. D'autre part, il approfondit les méthodologies avancées pour la surveillance des procédures analytiques, optimisant ainsi la précision diagnostique. De même, il intègre des stratégies pour l'étalonnage des équipements et le traitement des tests, facilitant ainsi la validation des résultats cliniques. En conséquence, il met l'accent sur la médecine fondée sur les preuves, en fournissant les outils nécessaires pour interpréter les données avec rigueur et étayer les décisions fondées sur des critères scientifiques actualisés.
Vous identifierez les composants et les propriétés des réactifs, des solutions, des tampons et des contrôles afin de garantir leur préparation correcte’’
Module 1. Cadre juridique et paramètres standard du laboratoire d’Analyses Cliniques
1.1. Normes ISO applicables à un laboratoire clinique modernisé
1.1.1. Flux de travail et absence de déchets
1.1.2. Cartographie continue des procédures
1.1.3. Classement physique des fonctions du personnel
1.1.4. Suivi des étapes analytiques à l'aide d'indicateurs cliniques
1.1.5. Systèmes de communication interne et externe
1.2. Sécurité et gestion des déchets d'activités de soins
1.2.1. Sécurité des laboratoires cliniques
1.2.1.1. Plan d'évacuation d'urgence
1.2.1.2. Évaluation des risques
1.2.1.3. Règles d'exploitation standard
1.2.1.4. Travail sans surveillance
1.2.2. Gestion des déchets sanitaires
1.2.2.1. Types de déchets sanitaires
1.2.2.2. Emballage
1.2.2.3. Destination
1.3. Modèle de normalisation des processus sanitaires
1.3.1. Concept et objectifs de la normalisation des processus
1.3.2. Variabilité Clinique
1.3.3. La nécessité de la gestion des processus
1.4. Gestion de la documentation des soins de santé
1.4.1. Configuration de l'archive
1.4.1.1. Conditions fixées
1.4.1.2. Prévention des incidents
1.4.2. La sécurité dans les archives
1.4.3. Procédures administratives
1.4.3.1. Programme d'exploitation standard
1.4.3.2. Enregistrements
1.4.3.3. Localisation
1.4.3.4. Transfert
1.4.3.5. Préservation
1.4.3.6. Retrait
1.4.3.7. Élimination
1.4.4. Tenue de dossiers électroniques
1.4.5. Assurance qualité
1.4.6. Fermeture des archives
1.5. Contrôle de qualité dans un laboratoire clinique
1.5.1. Contexte juridique de la qualité des soins de santé
1.5.2. Rôle du personnel dans l'assurance de la qualité
1.5.3. Inspections sanitaires
1.5.3.1. Concept
1.5.3.2. Types d'inspections
1.5.3.2.1. Enquêtes
1.5.3.2.2. Installations
1.5.3.2.3. Processus
1.5.4. Audits des données cliniques
1.5.4.1. Concept d'un audit
1.5.4.2. Accréditations ISO
1.5.4.2.1. Laboratoire: ISO 15189, ISO 17025
1.5.4.2.2. ISO 17020, ISO 22870
1.5.4.3. Certifications
1.6. Évaluation de la qualité analytique : indicateurs cliniques
1.6.1. Description du système
1.6.2. Flowchart du travail
1.6.3. Importance de la qualité des laboratoires
1.6.4. Gestion des procédures d'analyse clinique
1.6.4.1. Assurance de la qualité
1.6.4.2. Prélèvement et manipulation des échantillons
1.6.4.3. Vérification et validation des méthodes
1.7. Niveaux de décision clinique dans les fourchettes de référence
1.7.1. Tests de laboratoire clinique
1.7.1.1. Concept
1.7.1.2. Paramètres cliniques standard
1.7.2. Intervalles de référence
1.7.2.1. Gammes de laboratoire Unités internationales
1.7.2.2. Guide pour la validation des méthodes d'analyse
1.7.3. Niveaux de décision clinique
1.7.4. Sensibilité et spécificité des résultats cliniques
1.7.5. Valeurs critiques Variabilité
1.8. Traitement des demandes de tests cliniques
1.8.1. Types de demandes les plus courantes
1.8.2. Utilisation efficace Vs. Demande excédentaire
1.8.3. Exemple pratique de demandes en milieu hospitalier
1.9. La méthode scientifique dans les Analyses Cliniques
1.9.1. Question PICO
1.9.2. Protocole
1.9.3. Recherche bibliographique
1.9.4. Plan de l'étude
1.9.5. Collecte des données
1.9.6. Analyse statistique et interprétation des résultats
1.9.7. Publication des résultats
1.10. La médecine fondée sur les faits scientifiques Application dans les Analyses Cliniques
1.10.1. Concept de preuve scientifique
1.10.2. Classification des niveaux de preuve scientifique
1.10.3. Guides de pratique clinique habituelle
1.10.4. Preuves appliquées aux Analyses Cliniques Ampleur de l'avantage
Module 2. Techniques Instrumentales en Laboratoire d'Analyses Cliniques
2.1. Techniques instrumentales d'Analyse Clinique
2.1.1. Introduction
2.1.2. Concepts Fondamentaux
2.1.3. Classification des méthodes instrumentales
2.1.3.1. Méthodes classiques
2.1.3.2. Méthodes Instrumentales
2.1.4. Préparation des réactifs, solutions, tampons et contrôles
2.1.5. Étalonnage de l'équipement
2.1.5.1. Importance de l'étalonnage
2.1.5.2. Méthodes d'étalonnage
2.1.6. Processus d'Analyse Clinique
2.1.6.1. Raisons de demander une Analyse Clinique
2.1.6.2. Étapes comprenant le processus d'Analyse
2.1.6.3. Préparation du patient et prélèvement d'échantillons
2.2. Techniques microscopiques en Analyses Cliniques
2.2.1. Introduction et concepts
2.2.2. Type de microscopes
2.2.2.1. Microscopes optiques
2.2.2.2. Microscopes électroniques
2.2.3. Lentilles, lumière et formation d'images
2.2.4. Fonctionnement et entretien du microscope à lumière visible
2.2.4.1. Manipulation et propriétés
2.2.4.2. Maintenance
2.2.4.3. Incidents d'observation
2.2.4.4. Application en Analyse Clinique
2.2.5. Autres microscopes. Caractéristiques et manipulation
2.2.5.1. Microscope à fond noir
2.2.5.2. Microscope à lumière polarisée
2.2.5.3. Microscope à interférence
2.2.5.4. Microscope inversé
2.2.5.5. Microscope à lumière ultraviolette
2.2.5.6. Microscope à fluorescence
2.2.5.7. Microscope électronique
2.3. Techniques microbiologiques en Analyse Clinique
2.3.1. Introduction et concept
2.3.2. Conception et normes de travail des laboratoires de microbiologie clinique
2.3.2.1. Normes et besoins en ressources
2.3.2.2. Routines et procédures de laboratoire
2.3.2.3. Stérilité et contamination
2.3.3. Techniques de culture cellulaire
2.3.3.1. Moyens de culture
2.3.4. Procédures d'extension et de coloration les plus couramment utilisées en microbiologie clinique
2.3.4.1. Reconnaissance bactérienne
2.3.4.2. Cytologie
2.3.4.3. Autres procédures
2.3.5. Autres méthodes d'Analyse microbiologique
2.3.5.1. Examen microscopique direct Identification de la flore normale et pathogène
2.3.5.2. Identification par des tests biochimiques
2.3.5.3. Tests immunologiques rapides
2.4. Techniques volumétriques, gravimétriques, électrochimiques et de titrage
2.4.1. Volumétrie Introduction et concept
2.4.1.1. Classification des méthodes
2.4.1.2. Procédure de laboratoire pour la réalisation de la volumétrie
2.4.2. Gravimétrie
2.4.2.1. Introduction et concept
2.4.2.2. Classification des méthodes gravimétriques
2.4.2.3. Procédure de laboratoire pour effectuer une gravimétrie
2.4.3. Techniques électrochimiques
2.4.3.1. Introduction et concept
2.4.3.2. Potentiométrie
2.4.3.3. Ampérométrie
2.4.3.4. Coulométrie
2.4.3.5. Conductimétrie
2.4.3.6. Applications en Analyse Clinique
2.4.4. Évaluations
2.4.4.1. Acide-base
2.4.4.2. Précipitations
2.4.4.3. Formation complexe
2.4.4.4. Applications en Analyse Clinique
2.5. Techniques spectrales en Analyse Clinique
2.5.1. Introduction et concepts
2.5.1.1. Le rayonnement électromagnétique et son interaction avec la matière
2.5.1.2. Absorption et émission de rayonnement
2.5.2. Spectrophotométrie Application en Analyse Clinique
2.5.2.1. Instrumentation
2.5.2.2. Procédure
2.5.3. Spectrophotométrie d'absorption atomique
2.5.4. Photométrie d'émission de flamme
2.5.5. Fluorimétrie
2.5.6. Néphélométrie et turbidimétrie
2.5.7. Spectrométrie de masse et de réflectance
2.5.7.1. Instrumentation
2.5.7.2. Procédure
2.5.8. Applications des techniques spectrales les plus courantes actuellement utilisées en Analyse clinique
2.6. Techniques d'immuno-essais dans l'Analyse Clinique
2.6.1. Introduction et concepts
2.6.1.1. Concepts immunologiques
2.6.1.2. Types d'immuno-essais
2.6.1.3. Réactivité croisée et antigène
2.6.1.4. Molécules de détection
2.6.1.5. Quantification et sensibilité analytique
2.6.2. Techniques immunohistochimiques
2.6.2.1. Concept
2.6.2.2. Procédure immunohistochimique
2.6.3. Technique immunohistochimique enzymatique
2.6.3.1. Concept et procédure
2.6.4. Immunofluorescence
2.6.4.1. Concepts et classification
2.6.4.2. Procédure d'immunofluorescence
2.6.5. Autres méthodes de dosage immunologique
2.6.5.1. Immunofélométrie
2.6.5.2. Immunodiffusion radiale
2.6.5.3. Immunoturbidimétrie
2.7. Techniques de séparation en Analyse Clinique. Chromatographie et électrophorèse
2.7.1. Introduction et concepts
2.7.2. Techniques chromatographiques
2.7.2.1. Principes, concepts et classification
2.7.2.2. Chromatographie gaz-liquide Concepts et procédure
2.7.2.3. Chromatographie liquide à haute performance Concepts et procédure
2.7.2.4. Chromatographie sur couche mince
2.7.2.5. Applications en Analyse Clinique
2.7.3. Techniques d'électrophorèse
2.7.3.1. Introduction et concepts
2.7.3.2. Instrumentation et procédure
2.7.3.3. Objectif et champ d'application de l'Analyse Clinique
2.7.3.4. Électrophorèse capillaire
2.7.3.4.1. Electrophorèse des protéines dans le sérum
2.7.4. Techniques hybrides: Masses ICP, masses de gaz et masses de liquides
2.8. Techniques de biologie moléculaire dans l'Analyse Clinique
2.8.1. Introduction et concepts
2.8.2. Technique d'extraction de l'ADN et de l'ARN
2.8.2.1. Procédure et stockage
2.8.3. Réaction en chaîne par polymérase PCR
2.8.3.1. Concept et justification
2.8.3.2. Instrumentation et procédures
2.8.3.3. Modifications de la méthode PCR
2.8.4. Techniques d'hybridation
2.8.5. Séquençage
2.8.6. Analyse des protéines par transfert de type Western
2.8.7. Protéomique et génomique
2.8.7.1. Concepts et procédures d'Analyse Clinique
2.8.7.2. Types d'études protéomiques
2.8.7.3. Bioinformatique et protéomique
2.8.7.4. Métabolomique
2.8.7.5. Pertinence en biomédecine
2.9. Techniques de détermination des éléments formés Cytométrie de flux. Analyse au chevet du patient
2.9.1. Numération des globules rouges
2.9.1.1. Nombre de cellules. Procédure
2.9.1.2. Pathologies diagnostiquées avec cette méthodologie
2.9.2. Numération des leucocytes
2.9.2.1. Procédure
2.9.2.2. Pathologies diagnostiquées par cette méthodologie
2.9.3. Cytométrie en flux
2.9.3.1. Introduction et concepts
2.9.3.2. Procédure de la technique
2.9.3.3. Applications de la cytométrie en Analyse Clinique
2.9.3.3.1. Applications en onco-hématologie
2.9.3.3.2. Applications dans le domaine des allergies
2.9.3.3.3. Applications dans le domaine de l'infertilité
2.9.4. Tests au chevet du patient
2.9.4.1. Concept
2.9.4.2. Types de spécimens
2.9.4.3. Techniques utilisées
2.9.4.4. Applications les plus utilisées des Analyses au chevet du patient
2.10. Interprétation des résultats, évaluation des méthodes d'analyse et des interférences analytiques
2.10.1. Rapport de laboratoire
2.10.1.1. Concept
2.10.1.2. Éléments caractéristiques du rapport de laboratoire
2.10.1.3. Interprétation du rapport
2.10.2. Évaluation des méthodes analytiques en Analyse Clinique
2.10.2.1. Concepts et objectifs
2.10.2.2. Linéarité
2.10.2.3. Véracité
2.10.2.4. Précision
2.10.3. Interférences analytiques
2.10.3.1. Concept, justification et classification
2.10.3.2. Interférents Endogènes
2.10.3.3. Interférents Exogènes
2.10.3.4. Procédures de détection et de quantification d'une interférence, dans une méthode ou une Analyse spécifique
Module 3. Biochimie I
3.1. Bases biochimiques et moléculaires des maladies
3.1.1. Altérations génétiques
3.1.2. Altérations de la signalisation cellulaire
3.1.3. Altérations du métabolisme
3.2. Métabolisme des nutriments
3.2.1. Concept de Métabolisme
3.2.2. Les phases biochimiques de la nutrition : digestion, transport, métabolisme, excrétion
3.2.3. Laboratoire clinique dans l'étude des altérations de la digestion, de l'absorption et du métabolisme des nutriments
3.3. Étude biochimique des vitamines et des carences en vitamines
3.3.1. Vitamines liposolubles
3.3.2. Vitamines hydrosolubles
3.3.3. Carences en vitamines
3.4. Étude biochimique des Altérations des protéines et des composés azotés
3.4.1. Protéines plasmatiques
3.4.2. Enzymologie clinique
3.4.3. Évaluation des marqueurs biochimiques de la fonction rénale
3.5. Etude biochimique de la régulation du métabolisme des glucides et de ses altérations physiopathologiques
3.5.1. Hypoglycémie
3.5.2. Hyperglycémies
3.5.3. Diabète sucré : diagnostic et suivi en laboratoire clinique
3.6. Étude biochimique des altérations physiopathologiques des lipides et lipoprotéines plasmatiques
3.6.1. Lipoprotéines
3.6.2. Dyslipidémies primaires
3.6.3. Hyperlipoprotéinémies
3.6.4. Sphingolipidose
3.7. La biochimie du sang au laboratoire de chimie
3.7.1. Hémostase sanguine
3.7.2. Coagulation et Fibrinolyse
3.7.3. Analyse biochimique du métabolisme du fer
3.8. Métabolisme minéral et ses Altérations cliniques
3.8.1. Homéostasie du calcium
3.8.2. Homéostasie du phosphore
3.8.3. Homéostasie du magnésium
3.8.4. Marqueurs biochimiques du remodelage osseux
3.9. Équilibre acido-basique et études des gaz du sang périphérique
3.9.1. Équilibre acide-base
3.9.2. Analyse des gaz du sang périphérique
3.9.3. Marqueurs des gaz du sang
3.10. L'équilibre hydro-électrolytique et ses Perturbations
3.10.1. Sodium
3.10.2. Potassium
3.10.3. Chlore
Module 4. Biochimie II
4.1. Troubles congénitaux du métabolisme des glucides
4.1.1. Perturbations de la digestion et de l'absorption intestinales des glucides
4.1.2. Troubles du métabolisme du galactose
4.1.3. Altérations du métabolisme du fructose
4.1.4. Altération du métabolisme du glycogène
4.1.4.1. Glycogénose: types
4.2. Perturbations congénitales du métabolisme des acides aminés
4.2.1. Troubles du métabolisme des acides aminés aromatiques
4.2.1.1. Phénylcétonurie
4.2.1.2. Acidurie glutarique de type 1
4.2.2. Troubles du métabolisme des acides aminés ramifiés
4.2.2.1. Maladie urinaire du sirop d'érable
4.2.2.2. Acidémie isovalérique
4.2.3. Perturbations du métabolisme des acides aminés soufrés
4.2.3.1. Homocystinurie
4.3. Perturbations congénitales du métabolisme des lipides
4.3.1. Bêta-oxydation des acides gras
4.3.1.1. Introduction à la bêta-oxydation des acides gras
4.3.1.2. Altération de la bêta-oxydation des acides gras
4.3.2. Cycle de la carnitine
4.3.2.1. Introduction au cycle de la carnitine
4.3.2.2. Perturbations du cycle de la carnitine
4.4. Troubles du cycle de l'urée
4.4.1. Le cycle de l'urée
4.4.2. Perturbations génétiques du cycle de l'urée
4.4.2.1. Déficit en ornithine transcarbamylase (OTC)
4.4.2.2. Autres troubles du cycle de l'urée
4.4.3. Diagnostic et traitement des maladies du cycle de l'urée
4.5. Pathologies moléculaires des bases nucléotidiques. Troubles du métabolisme des purines et des pyrimidines
4.5.1. Introduction au métabolisme des purines et des pyrimidines
4.5.2. Troubles du métabolisme des purines
4.5.3. Troubles du métabolisme des pyrimidines
4.5.4. Diagnostic des troubles des purines et des pyrimidines
4.6. Porphyries. Altérations de la Synthèse des Groupes Hémiques
4.6.1. Synthèse du groupe hème
4.6.2. Porphyries: types
4.6.2.1. Porphyries hépatiques
4.6.2.1.1. Porphyries aiguës
4.6.2.2. Porphyries hématopoïétiques
4.6.3. Diagnostic et traitement des porphyries
4.7. Icterus. Perturbations du Métabolisme de la Bilirubine
4.7.1. Introduction au métabolisme de la bilirubine
4.7.2. Ictère congénital
4.7.2.1. Hyperbilirubinémie non conjuguée
4.7.2.2. Hyperbilirubinémie non conjuguée
4.7.3. Diagnostic et traitement de la Jaunisse
4.8. Phosphorylation oxydative
4.8.1. Mitochondries
4.8.1.1. Enzymes mitochondriales et protéines mitochondriales
4.8.2. Chaîne de transport électronique
4.8.2.1. Transporteurs électroniques
4.8.2.2. Complexes électroniques
4.8.3. Couplage du transport électronique à la synthèse de l'ATP
4.8.3.1. ATP synthase
4.8.3.2. Agents découplant la phosphorylation oxydative
4.8.4. Lanceurs de NADH
4.9. Troubles mitochondriaux
4.9.1. Héritage maternel
4.9.2. Hétéroplasie et homoplasmie
4.9.3. Maladies mitochondriales
4.9.3.1. Neuropathie optique héréditaire de Leber
4.9.3.2. La maladie de Leigh
4.9.3.3. Le syndrome de MELAS
4.9.3.4. Épilepsie myoclonique à fibres rouges déchiquetées (MERRF)
4.9.4. Diagnostic et traitement des maladies mitochondriales
4.10. Autres troubles causés par des altérations d'autres organites
4.10.1. Lysosomes
4.10.1.1. Maladies lysosomales
4.10.1.1.1. Sphingolipidose
4.10.1.1.2. Mucopolysaccharidose.
4.10.2. Peroxysomes
4.10.2.1. Maladies Lysosomales
4.10.2.1.1. Syndrome de Zellweger
4.10.3. Appareil de Golgi
4.10.3.1. Maladies de l'appareil de Golgi
4.10.3.1.1. Mucolipidose II
Module 5. Biochimie III
5.1. Étude de la fonction motrice
5.1.1. Aperçu de la fonction motrice et du système ostéoarticulaire
5.1.2. Altération de la fonction motrice
5.1.3. Diagnostic des troubles de la fonction motrice
5.1.3.1. Techniques de diagnostic
5.1.3.2. Marqueurs moléculaires
5.2. Étude de la fonction cardiaque
5.2.1. Aperçu de la fonction cardiaque
5.2.2. Altérations de la fonction cardiaque
5.2.3. Diagnostic des anomalies de la fonction cardiaque
5.2.3.1. Techniques de diagnostic
5.2.3.2. Marqueurs moléculaires
5.3. Étude de la fonction rénale
5.3.1. Aperçu des fonctions rénales
5.3.2. Altérations des fonctions rénales
5.3.3. Diagnostic des troubles de la fonction rénale
5.3.3.1. Techniques de diagnostic
5.3.3.2. Marqueurs moléculaires
5.4. Études de la fonction hépatique
5.4.1. Aperçu de la fonction hépatique
5.4.2. Altérations de la fonction hépatique
5.4.3. Diagnostic des troubles de la fonction hépatique
5.4.3.1. Techniques de diagnostic
5.4.3.2. Marqueurs moléculaires
5.5. Étude de la fonction neurologique
5.5.1. Description de la fonction neurologique
5.5.2. Altérations de la fonction neurologique (Maladies Neurodégénératives)
5.5.3. Diagnostic des troubles de la fonction neurologique
5.5.3.1. Techniques de diagnostic
5.5.3.2. Marqueurs moléculaires
5.6. Étude de la fonction hypothalamique et hypophysaire
5.6.1. Description des fonctions hypothalamiques et hypophysaires
5.6.2. Altérations des fonctions hypothalamiques et hypophysaires
5.6.3. Diagnostic des perturbations des fonctions hypothalamiques et hypophysiques
5.6.3.1. Techniques de diagnostic
5.6.3.2. Marqueurs moléculaires
5.7. Étude de la fonction pancréatique
5.7.1. Aperçu de la fonction pancréatique
5.7.2. Altérations de la fonction pancréatique
5.7.3. Diagnostic des troubles de la fonction pancréatique
5.7.3.1. Techniques de diagnostic
5.7.3.2. Marqueurs moléculaires
5.8. Études des fonctions thyroïdiennes et parathyroïdiennes
5.8.1. Aperçu des fonctions thyroïdiennes et parathyroïdiennes
5.8.2. Altérations de la fonction thyroïdienne et parathyroïdienne
5.8.3. Diagnostic des anomalies de la fonction thyroïdienne et parathyroïdienne
5.8.3.1. Techniques de diagnostic
5.8.3.2. Marqueurs moléculaires
5.9. Étude de la fonction surrénalienne
5.9.1. Aperçu de la fonction surrénalienne
5.9.2. Altération de la fonction surrénalienne
5.9.3. Diagnostic des Troubles de la Fonction Surrénale
5.9.3.1. Techniques de diagnostic
5.9.3.2. Marqueurs moléculaires
5.10. Étude de la fonction des gonades
5.10.1. Aperçu de la fonction gonadique
5.10.2. Altérations de la fonction gonadique
5.10.3. Diagnostic des perturbations de la fonction gonadique
5.10.3.1. Techniques de diagnostic
5.10.3.2. Marqueurs moléculaires
Module 6. Biochimie IV
6.1. Étude de la fertilité et de l'infertilité Humaine
6.1.1. Problèmes gynécologiques les plus courants
6.1.1.1. Malformations de l'Appareil Reproducteur
6.1.1.2. Endométriose
6.1.1.3. Ovaires polykystiques
6.1.1.4. Concentration sérique de FSH
6.1.2. Problèmes andrologiques les plus courants
6.1.2.1. Altération de la Qualité du Sperme
6.1.2.2. Éjaculation rétrograde
6.1.2.3. Lésions neurologiques
6.1.2.4. Concentration de FSH
6.2. Technologies actuelles de reproduction assistée
6.2.1. Insémination artificielle ou IA
6.2.2. IAC
6.2.3. IAD
6.2.4. Ponction ovarienne
6.2.5. Fécondation in vitro et injection intracytoplasmique de spermatozoïdes
6.2.6. Transfert de gamètes
6.3. Techniques de conservation des gamètes dans le laboratoire d'urologie. Banque de dons de gamètes
6.3.1. Cadre juridique actuel
6.3.2. Principes de la cryoconservation des cellules
6.3.3. Protocole de congélation/décongélation des ovocytes
6.3.4. Protocole de congélation/décongélation des spermatozoïdes
6.3.5. Banque de dons de gamètes
6.3.5.1. Concept et objectif de la reproduction assistée
6.3.5.2. Caractéristiques d'un donneur
6.4. Etude de l'embryologie et de l'andrologie en laboratoire clinique
6.4.1. Culture de pré-embryons et de spermatozoïdes
6.4.2. Stades embryonnaires
6.4.3. Techniques d'étude du sperme
6.4.3.1. Séminogramme
6.4.3.2. Lavage séminal
6.5. Techniques de laboratoire pour l'étude de la croissance cellulaire, de la sénescence cellulaire et de l'apoptose cellulaire
6.5.1. Étude de la croissance cellulaire
6.5.1.1. Concept
6.5.1.2. Paramètres conditionnant la croissance cellulaire
6.5.1.2.1. Viabilité
6.5.1.2.2. Multiplication
6.5.1.2.3. Température
6.5.1.2.4. Agents externes
6.5.1.3. Applications pratiques en AnalysesCliniques
6.5.2. Étude de la sénescence cellulaire et de l'apoptose
6.5.2.1. Concept de sénescence
6.5.2.2. Coloration à l'Hématoxyline/Éosine
6.5.2.3. Application clinique du stress oxydatif
6.6. Analyse des fluides corporels
6.6.1. Le liquide amniotique
6.6.2. Salive Nasopharyngeal
6.6.3. CSF
6.6.4. liquide synovial
6.6.5. Pleural
6.6.6. Péricarde
6.6.7. Péritonéal
6.7. Etude de l'urine dans le laboratoire d'urologie et d'anatomie pathologique
6.7.1. Analyse d'urine systématique
6.7.2. Culture d'urine
6.7.3. Cytologie anatomopathologie
6.8. Examen clinique des selles
6.8.1. Examen physique
6.8.2. Sang occulte fécal
6.8.3. Nouvel examen
6.8.4. Culture des selles
6.9. Étude moléculaire du Cancer. Marqueurs tumoraux les plus courants
6.9.1. PSA
6.9.2. EGFR
6.9.3. Gène HER2
6.9.4. CD20
6.9.5. Enolase neuronale spécifique NSE
6.9.6. FAP
6.9.7. Gène ALK
6.9.8. Gène ROS1
6.9.9. Mutation BRAFV600
6.10. Surveillance thérapeutique des médicaments Pharmacocinétique
6.10.1. Concept
6.10.2. Paramètres de l'étude
6.10.2.1. Absorption
6.10.2.2. Distribution
6.10.2.3. Élimination
6.10.3. Applications cliniques de la pharmacocinétique
Module 7. Hématologie
7.1. Introduction au système hématopoïétique et aux techniques d'étude
7.1.1. Classification des cellules sanguines et hématopoïèse
7.1.2. Hémocytométrie et étude des frottis sanguins
7.1.3. Étude de la moelle osseuse
7.1.4. Rôle de l'immunophénotypage dans le diagnostic des maladies hématologiques
7.1.5. Cytogénétique et biologie moléculaire dans le diagnostic hématologique
7.2. Diagnostic des troubles érythrocytaires. Anémies, Érythrocytoses, Hémoglobinopathies et Thalassémies
7.2.1. Classification des types d'Anémies
7.2.1.1. Classification étiopathogénique
7.2.1.2. Classification selon le MCV
7.2.1.2.1. Anémie Microcytaire
7.2.1.2.2. Anémie Normocytaire
7.2.1.2.3. Anémie Macrocytaire
7.2.2. Erythrocytose. Diagnostic différentiel
7.2.2.1. Érythrocytose Primaire
7.2.2.2. Érythrocytose Secondaire
7.2.3. Hémoglobinopathies et Thalassémies
7.2.3.1. Classification
7.2.3.2. Diagnostic de laboratoire
7.3. Altérations quantitatives de la série blanche
7.3.1. Neutrophiles : Neutropénie et Neutrophilie
7.3.2. Lymphocytes : Lymphopénie et Lymphocytose
7.4. Diagnostic des troubles plaquettaires
7.4.1. Anomalies Morphologiques : Thrombocytopathies
7.4.2. Thrombocytopénies Approche diagnostique
7.5. Syndromes Myéloprolifératifs et Myélodysplasiques
7.5.1. Résultats de laboratoire et examens complémentaires
7.5.1.1. Hémogramme et frottis de sang périphérique
7.5.1.2. Étude de la moelle osseuse
7.5.1.2.1. Morphologie de la moelle osseuse
7.5.1.2.2. Cytométrie en flux
7.5.1.2.3. Cytogénétique
7.5.1.2.4. Biologie moléculaire
7.5.2. Classification diagnostique Diagnostic différentiel
7.6. Les gammapathies monoclonales. Myélome Multiple
7.6.1. Investigation des Gammapathies Monoclonales
7.6.1.1. Morphologie de la moelle osseuse
7.6.1.2. Étude du composant monoclonal
7.6.1.3. Autres études de laboratoire
7.6.2. Classification des Gammapathies Monoclonales. Diagnostic différentiel
7.6.2.1. Gammapathie Monoclonale de signification incertaine et myélome quiescent
7.6.2.2. Myélome multiple
7.6.2.2.1. Critères de diagnostic
7.6.2.3. Amyloïdose
7.6.2.4. Macroglobulinémie de Waldenström
7.7. Diagnostic différentiel des leucémies aiguës
7.7.1. Leucémie myéloïde aiguë Leucémie Promyélocytaire
7.7.1.1. Résultats de laboratoire et examens complémentaires
7.7.1.2. Hémogramme et frottis de sang périphérique
7.7.1.3. Étude de la moelle osseuse
7.7.1.3.1. Morphologie de la moelle osseuse
7.7.1.3.2. Cytométrie en flux
7.7.1.3.3. Cytogénétique
7.7.1.3.4. Biologie moléculaire
7.7.1.4. Classification diagnostique
7.7.2. Leucémie lymphoïde aiguë
7.7.2.1. Résultats de laboratoire et examens complémentaires
7.7.2.2. Hémogramme et frottis de sang périphérique
7.7.2.3. Étude de la moelle osseuse
7.7.2.3.1. Morphologie de la moelle osseuse
7.7.2.3.2. Cytométrie en flux
7.7.2.3.3. Cytogénétique
7.7.2.3.4. Biologie moléculaire
7.7.2.4. Classification diagnostique
7.8. Néoplasmes Lymphoïdes B et T Matures
7.8.1. Syndromes B-lymphoprolifératifs chroniques. Leucémie Lymphoïde Chronique
7.8.1.1. Études de laboratoire et diagnostic différentiel
7.8.1.1.1. Leucémie lymphocytaire chronique
7.8.1.1.2. Tricholeucémie
7.8.1.1.3. Lymphome de la Zone Marginale Splénique
7.8.1.1.4. Leucémie Prolymphocytaire
7.8.1.1.5. Leucémie à Lymphocytes Granuleux
7.8.2. Lymphomes non Hodgkiniens
7.8.2.1. Bilan initial et diagnostic
7.8.2.2. Classification des Néoplasmes Lymphoïdes
7.8.2.2.1. Lymphome Folliculaire
7.8.2.2.2. Lymphome à Cellules du Manteau
7.8.2.2.3. Lymphome Diffus à Grandes Cellules B
7.8.2.2.4. Lymphome du MALT
7.8.2.2.5. Lymphome de Burkitt
7.8.2.2.6. Lymphomes T Périphériques
7.8.2.2.7. Lymphomes Cutanés
7.8.2.2.8. Autres
7.8.3. Lymphome de Hodgkin
7.8.3.1. Tests complémentaires
7.8.3.2. Classification histologique
7.9. Diagnostic des Troubles de la Coagulation
7.9.1. Étude des Diathèses Hémorragiques
7.9.1.1. Premiers tests
7.9.1.2. Études spécifiques
7.9.2. Troubles Congénitaux de la Coagulation
7.9.2.1. Hémophilie A et B
7.9.2.2. Maladie de Von Willebrand
7.9.2.3. Autres Coagulopathies Congénitales
7.9.3. Troubles Acquis de la Coagulation
7.9.4. Thrombose et Thrombophilie. Syndrome des Antiphospholipides
7.9.5. Surveillance du traitement anticoagulant
7.10. Introduction à l'hémothérapie
7.10.1. Groupes sanguins
7.10.2. Composants sanguins
7.10.3. Recommandations pour l'utilisation des produits sanguins
7.10.4. Réactions transfusionnelles les plus fréquentes
Module 8. Microbiologie et parasitologie
8.1. Concepts généraux en microbiologie
8.1.1. Structure des micro-organismes
8.1.2. Nutrition, métabolisme et croissance microbienne
8.1.3. Taxonomie microbienne
8.1.4. Génomique et génétique microbiennes
8.2. Étude des infections bactériennes
8.2.1. Les bactéries à Gram positif
8.2.2. Les bactéries à Gram négatif
8.2.3. Bacilles à Gram positif
8.2.4. Bacilles Gram-négatifs
8.2.5. Autres bactéries cliniquement pertinentes
8.2.5.1. Legionella Pneumophila
8.2.5.2. Mycobactéries
8.3. Techniques générales en microbiologie
8.3.1. Traitement des échantillons microbiologiques
8.3.2. Types d'échantillons microbiologiques
8.3.3. Techniques de semis
8.3.4. Types de colorations en microbiologie
8.3.5. Techniques actuelles d'identification des micro-organismes
8.3.5.1. Tests biochimiques
8.3.5.2. Systèmes commerciaux manuels ou automatisés et galeries multi-tests
8.3.5.3. Spectrométrie de masse MALDI TOF
8.3.5.4. Tests moléculaires
8.3.5.4.1. ARNr 16S
8.3.5.4.2. ARNr 16S-23S
8.3.5.4.3. ARNr 23S
8.3.5.4.4. gen rpoB
8.3.5.4.5. gen gyrB
8.3.5.5. Diagnostic sérologique des Infections microbiennes
8.4. Test de sensibilité aux antimicrobiens
8.4.1. Mécanismes de la résistance aux antimicrobiens
8.4.2. Test de sensibilité
8.4.3. Antimicrobiens
8.5. Recherche en infections virales
8.5.1. Principes de base en virologie
8.5.2. Taxonomie
8.5.3. Virus ayant une incidence sur le système respiratoire
8.5.4. Virus ayant une incidence sur le système digestif
8.5.5. Virus affectant le système nerveux central
8.5.6. Virus affectant le système reproducteur
8.5.7. Virus systémiques
8.6. Techniques générales en Virologie
8.6.1. Traitement des échantillons
8.6.2. Techniques de laboratoire pour le diagnostic viral
8.6.3. Antiviraux
8.7. Infections fongiques courantes
8.7.1. Informations générales sur les champignons
8.7.2. Taxonomie
8.7.3. Mycoses primaires
8.7.4. Mycoses opportunistes
8.7.5. Mycoses sous-cutanées
8.7.6. Mycoses cutanées et superficielles
8.7.7. Mycoses d'étiologie atypique
8.8. Techniques de diagnostic en mycologie clinique
8.8.1. Traitement des échantillons
8.8.2. Étude des mycoses superficielles
8.8.3. Étude des mycoses sous-cutanées
8.8.4. Investigation des mycoses profondes
8.8.5. Recherche de mycoses opportunistes
8.8.6. Techniques de diagnostic
8.8.7. Antifongiques
8.9. Maladies parasitaires
8.9.1. Concepts généraux en parasitologie
8.9.2. Protozoaires
8.9.2.1. Amibes (Sarcodina)
8.9.2.2. Ciliés (Ciliophora)
8.9.2.3. Flagellés (Mastigophora)
8.9.2.4. Apicomplexa
8.9.2.5. Plasmodium
8.9.2.6. Sarcocystis
8.9.2.7. Microsporidies
8.9.3. Helminthes
8.9.3.1. Nématodes
8.9.3.2. Plathelminthes
8.9.3.2.1. Cestodes
8.9.3.2.2. Trématodes
8.9.4. Arthropodes
8.10. Techniques de diagnostic en parasitologie clinique
8.10.1. Traitement des échantillons
8.10.2. Méthodes de diagnostic
8.10.3. Antiparasitaires
Module 9. Immunologie
9.1. Organes du système immunitaire
9.1.1. Organes lymphoïdes primaires
9.1.1.1. Foie fœtal
9.1.1.2. Moelle osseuse
9.1.1.3. Thymus
9.1.2. Organes lymphoïdes secondaires
9.1.2.1. Rate
9.1.2.2. Ganglions lymphatiques
9.1.2.3. Tissu lymphoïde associé à la muqueuse
9.1.3. Organes lymphoïdes tertiaires
9.1.4. Système lymphatique
9.2. Cellules du système immunitaire
9.2.1. Granulocytes
9.2.1.1. Neutrophiles
9.2.1.2. Eosinophiles
9.2.1.3. Basophiles
9.2.2. Monocytes et macrophages
9.2.3. Lymphocytes
9.2.3.1. Lymphocytes T
9.2.3.2. Lymphocytes B
9.2.4. Cellules tueuses naturelles
9.2.5. Cellules présentatrices d'antigènes
9.3. Antigènes et immunoglobulines
9.3.1. Antigénicité et immunogénicité
9.3.1.1. Antigène
9.3.1.2. Immunogène
9.3.1.3. Epitopes
9.3.1.4. Haptènes et transporteurs
9.3.2. Immunoglobulines
9.3.2.1. Structure et fonction
9.3.2.2. Classification des immunoglobulines
9.3.2.3. Hypermutation somatique et changement d'isotype
9.4. Système de complément
9.4.1. Fonctions
9.4.2. Voies d'activation
9.4.2.1. Voie classique
9.4.2.2. Itinéraire alternatif
9.4.2.3. Voie des lectines
9.4.3. Récepteurs du complément
9.4.4. Complément et inflammation
9.4.5. Cascade de kinine
9.5. Complexe majeur d'histocompatibilité
9.5.1. Antigènes majeurs et mineurs d'histocompatibilité
9.5.2. Génétique HLA
9.5.3. HLA et maladie
9.5.4. Immunologie de la transplantation
9.6. Réponse immunitaire
9.6.1. Réponse immunitaire innée et adaptative
9.6.2. Réponse immunitaire humorale
9.6.2.1. Réponse primaire
9.6.2.2. Réponse secondaire
9.6.3. Réponse immunitaire à médiation cellulaire
9.7. Maladies auto-immunes
9.7.1. Tolérance immunogène
9.7.2. Auto-immunité
9.7.3. Maladies auto-immunes
9.7.4. Étude des maladies auto-immunes
9.8. Immunodéficiences
9.8.1. Immunodéficiences primaires
9.8.2. Immunodéficiences secondaires
9.8.3. Immunité anti-tumorale
9.8.4. Évaluation de l'immunité
9.9. Réactions d'hypersensibilité
9.9.1. Classification des réactions d'hypersensibilité
9.9.2. Réactions allergiques ou d'hypersensibilité de type I
9.9.3. Anaphylaxie
9.9.4. Méthodes de diagnostic allergologique
9.10. Techniques immuno-analytiques
9.10.1. Techniques de précipitation et d'agglutination
9.10.2. Techniques de fixation du complément
9.10.3. Techniques ELISA
9.10.4. Techniques immunochromatographiques
9.10.5. Techniques de dosage radio-immunologique
9.10.6. Isolement des lymphocytes
9.10.7. Technique de microlymphocytotoxicité
9.10.8. Culture de lymphocytes mixtes
9.10.9. La cytométrie en flux appliquée à l'immunologie
9.10.10. Cytométrie en flux
Module 10. Génétique
10.1. Introduction à la génétique médicale Généalogies et modèles d'hérédité
10.1.1. Développement historique de la génétique Concepts clés
10.1.2. Structure des gènes et régulation de leur expression Épigénétique
10.1.3. La variabilité génétique Mutation et réparation de l'ADN
10.1.4. La génétique humaine Organisation du génome humain
10.1.5. Les maladies génétiques Morbidité et mortalité
10.1.6. L'hérédité humaine Concept de génotype et de phénotype
10.1.6.1. Modèles d'hérédité mendélienne
10.1.6.2. Héritage multigénique et mitochondrial
10.1.7. Construction de pedigrees
10.1.7.1. Estimation des fréquences alléliques, génotypiques et phénotypiques
10.1.7.2. Analyse de la ségrégation
10.1.8. Autres facteurs affectant le phénotype
10.2. Techniques de biologie moléculaire utilisées en génétique
10.2.1. Génétique et diagnostic moléculaire
10.2.2. La réaction en chaîne par polymérase (PCR) appliquée au diagnostic et à la recherche en génétique
10.2.2.1. Détection et amplification de séquences spécifiques
10.2.2.2. Quantification de l'acide nucléique (RT-PCR)
10.2.3. Techniques de clonage : isolement, restriction et ligature des fragments d'ADN
10.2.4. Détection de mutations et mesure de la variabilité génétique: RFLP, VNTR, SNPs
10.2.5. Techniques de séquençage massif. NGS
10.2.6. La transgénèse. Thérapie génique
10.2.7. Techniques cytogénétiques
10.2.7.1. Bandes chromosomiques
10.2.7.2. FISH, CGH
10.3. Cytogénétique humaine. Anomalies chromosomiques numériques et structurelles
10.3.1. Étude de la cytogénétique humaine. Caractéristiques
10.3.2. Caractérisation des chromosomes et nomenclature cytogénétique
10.3.2.1. Analyse chromosomique: Caryotypage
10.3.3. Anomalies du nombre de chromosomes
10.3.3.1. Polyploïdie
10.3.3.2. Anéuploïdie
10.3.4. Altérations chromosomiques structurelles Dosage des gènes
10.3.4.1. Suppressions
10.3.4.2. Duplications
10.3.4.3. Inversions
10.3.4.4. Translocations
10.3.5. Polymorphismes chromosomiques
10.3.6. Empreinte génétique
10.4. Diagnostic prénatal des altérations génétiques et des anomalies congénitales. Diagnostic génétique préimplantatoire
10.4.1. Diagnostic prénatal. En quoi consiste-t-il?
10.4.2. Incidence des anomalies congénitales
10.4.3. Indications pour le diagnostic prénatal
10.4.4. Méthodes de diagnostic prénatal
10.4.4.1. Procédures non invasives : Dépistage au cours du premier et du deuxième trimestre. TPNI
10.4.4.2. Procédures invasives: Amniocentèse, cordocentèse et biopsie chorionique
10.4.5. Diagnostic génétique préimplantatoire Indications
10.4.6. Biopsie d'embryon et Analyse génétique
10.5. Maladies génétiques I
10.5.1. Maladies à transmission autosomique dominante
10.5.1.1. Achondroplasie
10.5.1.2. La maladie de Huntington
10.5.1.3. Rétinoblastome
10.5.1.4. La maladie de Charcot-Marie-Tooth
10.5.2. Maladies à transmission autosomique récessive
10.5.2.1. Phénylcétonurie
10.5.2.2. Anémie Falciforme
10.5.2.3. Mucoviscidose
10.5.2.4. Le syndrome de Laron
10.5.3. Maladies à Hérédité Liée au Sexe
10.5.3.1. Le syndrome de Rett
10.5.3.2. Hémophilie
10.5.3.3. Dystrophie Musculaire de Duchenne
10.6. Maladies génétiques II
10.6.1. Maladies de l'hérédité mitochondriale
10.6.1.1. Encéphalomyopathies mitochondriales
10.6.1.2. Neuropathie optique héréditaire de Leber (LHON)
10.6.2. Phénomènes d'anticipation génétique
10.6.2.1. La maladie de Huntington
10.6.2.2. Le syndrome du X fragile
10.6.2.3. Ataxies spinocérébelleuses
10.6.3. Hétérogénéité allélique
10.6.3.1. Syndrome d'Usher
10.7. Génétique des Maladies Complexes. Base moléculaire du Cancer Sporadique et Familial
10.7.1. Héritage multifactoriel
10.7.1.1. Polygénésie
10.7.2. Contribution des facteurs environnementaux aux Maladies Complexes
10.7.3. Génétique quantitative
10.7.3.1. Héritabilité
10.7.4. Maladies Complexes courantes
10.7.4.1. Diabète Mellitus
10.7.4.2. La maladie d'Alzheimer
10.7.5. Maladies Comportementales et traits de personnalité: alcoolisme, autisme et schizophrénie
10.7.6. Cancer: base moléculaire et facteurs environnementaux
10.7.6.1. Génétique des processus de prolifération et de différenciation cellulaires. Cycle cellulaire
10.7.6.2. Gènes de réparation de l'ADN, oncogènes et gènes suppresseurs de Tumeurs
10.7.6.3. Influence de l'environnement sur l'apparition du Cancer
10.7.7. Cancer familial
10.8. Génomique et protéomique
10.8.1. Sciences omiques et leur utilité en médecine
10.8.2. Analyse et séquençage du génome
10.8.2.1. Bibliothèques d'ADN
10.8.3. Génomique comparative
10.8.3.1. Organismes modèles
10.8.3.2. Comparaison des séquences
10.8.3.3. Projet du génome humain
10.8.4. Génomique fonctionnelle
10.8.4.1. Transcriptomique
10.8.4.2. Organisation structurelle et fonctionnelle du génome
10.8.4.3. Éléments génomiques fonctionnels
10.8.5. Du génome au protéome
10.8.5.1. Modifications post-traductionnelles
10.8.6. Stratégies de séparation et de purification des protéines
10.8.7. Identification des protéines
10.8.8. Interactome
10.9. Le conseil génétique Aspects éthiques et juridiques du diagnostic et de la recherche en génétique
10.9.1. Le conseil génétique Concepts et principes techniques fondamentaux
10.9.1.1. Risque de récurrence des maladies d'origine génétique
10.9.1.2. Le conseil génétique dans le diagnostic prénatal
10.9.1.3. Principes éthiques du conseil génétique
10.9.2. Législation sur les nouvelles technologies génétiques
10.9.2.1. Génie génétique
10.9.2.2. Clonage humain
10.9.2.3. Thérapie génique
10.9.3. Bioéthique et génétique
10.10. Biobanques et outils bioinformatiques
10.10.1. Biobanques Concept et fonctions
10.10.2. Organisation, gestion et qualité des biobanques
10.10.3. Biologie computationnelle
10.10.4. Big data et apprentissage automatique
10.10.5. Applications de la bioinformatique en biomédecine
10.10.5.1. Analyse des séquences
10.10.5.2. Analyse d'image
10.10.5.3. Médecine personnalisée et de précision
Vous reconnaîtrez les paramètres clés de la gazométrie sanguine périphérique afin d'évaluer avec précision l'équilibre acido-basique et l'oxygénation du patient’’
Mastère Spécialisé en Analyses Cliniques
Le rôle des laboratoires est l'un des piliers fondamentaux pour le développement optimal des sciences médicales. Sans la gestion de la recherche du personnel qui y travaille, il serait impossible à la fois d'identifier les différentes manifestations atypiques du corps au niveau endogène, et de consolider les bases de la création de nouveaux traitements pour lutter contre les pathologies émergentes. Sachant que l'avenir nous réserve de grands défis en termes de gestion des maladies, compte tenu de l'énorme situation de la pandémie de COVID-19, nous avons conçu chez TECH Global University le Mastère Spécialisé en Analyses Cliniques, un programme académique 100 % virtuel destiné à tous les diplômés du secteur médical qui souhaitent acquérir des compétences dans les domaines suivants : sélection et collecte d'échantillons, interprétation des résultats biochimiques, mise en œuvre de méthodes analytiques, connaissance des altérations du système hémostatique, techniques d'hémothérapie et médecine transfusionnelle, compréhension des anomalies génétiques et des processus immunologiques au sein d'environnements de laboratoire, entre autres. Avec un contenu multimédia créé par une équipe d'experts dans des domaines spécialisés de la médecine, vous serez en mesure d'élargir vos horizons curriculaires et d'aspirer à une position de statut scientifique vital.
Osez devenir un expert de laboratoire
Le poids des études cliniques au sein des laboratoires ne se limite pas au seul secteur de la santé, leur sphère d'influence s'étend à la quasi-totalité de la stabilité sociale à l'échelle macro. Pour illustrer cela, prenons comme exemple le cas d'un patient de 55 ans originaire de la province de Hubei à Wuhan en Chine qui, le 17 novembre 2019, s'est présenté à l'hôpital convaincu d'être atteint d'une maladie respiratoire classique. Les analyses moléculaires et microbiologiques effectuées ont été les signaux d'alarme qui ont déclenché des actions prioritaires, d'abord dans le pays, puis dans le monde entier ; car un nouveau type de coronavirus mortel avait été découvert. Êtes-vous prêt à faire partie des spécialistes qui peuvent sauver le monde d'une pandémie latente ? Notre programme vous offre le cursus le plus complet, couvrant des concepts tels que les techniques de biologie moléculaire, y compris la réaction en chaîne de la polymérase PCR (utilisée pour diagnostiquer le COVID-19). Vous apprendrez également des sujets fascinants tels que la parasitologie, qui est essentielle pour étudier les nouvelles infections bactériennes, le tout dans le confort du modèle virtuel. Voulez-vous savoir pourquoi nous sommes les leaders de l'enseignement supérieur à distance ? Inscrivez-vous chez nous et découvrez-le.