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La realización de Pruebas Diagnósticas en un Laboratorio de Análisis Clínicos ofrece una serie de ventajas significativas en el campo de la Medicina y la atención al paciente. Entre ellas, destaca que estos procedimientos contribuyen a la detección de enfermedades tempranas (como Diabetes, Hipertensión Arterial o patologías cardíacas). De este modo, los facultativos pueden llevar a cabo tratamientos precoces y altamente especializados con el objetivo de mejorar significativamente los pronósticos de los pacientes. Además, estas pruebas constituyen una valiosa herramienta para efectuar el monitoreo constante de afecciones crónicas y evaluar la efectividad de las terapias aplicadas.

En este contexto, TECH implementa un pionero Experto Universitario en Pruebas Diagnósticas en un Laboratorio de Análisis Clínicos. El itinerario académico examinará el marco legal de un laboratorio clínico, lo que permitirá a los egresados realizar pruebas analíticas con seguridad. A su vez, los materiales didácticos profundizarán en las técnicas instrumentales aplicadas en los Análisis Clínicos, tales como la calibración de equipos, los procedimientos microbiológicos o los métodos volumétricos. Gracias a esto, los médicos obtendrán competencias para usar los equipos más sofisticados y obtener muestras en alta resolución. En relación con esto, el temario abordará los problemas andrológicos más comunes con el fin de que los profesionales puedan interpretar mejor los resultados de los Análisis Clínicos. Asimismo, destaca la participación de un Director Invitado Internacional de amplio prestigio, que impartirá unas rigurosas Masterclasses durante el programa de estudios.

Por otra parte, TECH piensa en el confort y en la excelencia, por lo que este programa universitario otorga una exclusiva actualización y de la mejor calidad académica. Por lo tanto, constituye una titulación de gran flexibilidad al necesitar tan sólo de un dispositivo con conexión a Internet para acceder al Campus Virtual. Además, se basa en la revolucionaria metodología del Relearning, consistente en la reiteración de aspectos claves para garantizar un aprendizaje progresivo.

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Su contenido multimedia, elaborado con la última tecnología educativa, permitirá al profesional un aprendizaje situado y contextual, es decir, un entorno simulado que proporcionará una capacitación inmersiva programada para entrenarse ante situaciones reales.

El diseño de este programa se centra en el Aprendizaje Basado en Problemas, mediante el cual el profesional deberá tratar de resolver las distintas situaciones de práctica profesional que se le planteen a lo largo del curso académico. Para ello, contará con la ayuda de un novedoso sistema de vídeo interactivo realizado por reconocidos expertos.

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El plan de estudios ahondará en el marco legal y los parámetros estándar en este ámbito, lo que garantizará que las actividades de los médicos cumplan con las normativas legales. En este sentido, el temario proporcionará a los egresados las técnicas instrumentales más innovadoras en los Análisis Clínicos con el fin de que los médicos manejen correctamente los equipos y obtengan resultados de las pruebas de alta calidad. Asimismo, el programa analizará los procedimientos más empleados tanto en materia de Microbiología como Parasitología, lo que permitirá a los egresados realizar el diagnóstico de patologías infecciosas.

Adquirirás competencias para interpretar los resultados de las pruebas diagnósticas con eficacia y realizar los diagnósticos de enfermedades más precisos”

Módulo 1. Marco Legal y Parámetros Estándar del Laboratorio de Análisis Clínicos   

1.1. Normativa ISO aplicable a un laboratorio clínico modernizado 

1.1.1. Flujo de trabajos y libres de desechos  
1.1.2. Mapeo continuo de los procedimientos  
1.1.3. Archivo físico de las funciones del personal  
1.1.4. Monitorización de las etapas analíticas con indicadores clínicos 
1.1.5. Sistemas de comunicación interna y externa 

1.2. Seguridad y manejo de los residuos sanitarios 

1.2.1. Seguridad de un laboratorio clínico 

1.2.1.1. Plan de evacuación en emergencia 
1.2.1.2. Evaluación de los riesgos 
1.2.1.3. Normas estandarizadas de trabajo 
1.2.1.4. Trabajos sin vigilancia 

1.2.2. Manejo de los residuos sanitarios 

1.2.2.1. Clases de residuos sanitarios  
1.2.2.2. Envasado 
1.2.2.3. Destino 

1.3. Modelo de estandarización de los procesos sanitarios 

1.3.1. Concepto y objetivos de la estandarización de los procesos 
1.3.2. Variabilidad Clínica 
1.3.3. Necesidad de una gestión por procesos 

1.4. Gestión de documentación sanitaria 

1.4.1. Instalación del archivo 

1.4.1.1. Condiciones establecidas 
1.4.1.2. Prevención de incidentes 

1.4.2. Seguridad en los archivos 
1.4.3. Procedimientos administrativos 

1.4.3.1. Plan normalizado de trabajo 
1.4.3.2. Registros 
1.4.3.3. Ubicación 
1.4.3.4. Transferencia 
1.4.3.5. Conservación 
1.4.3.6. Retirada 
1.4.3.7. Eliminación 

1.4.4. Archivo de registro electrónico 
1.4.5. Garantía de calidad 
1.4.6. Cierre del archivo 

1.5. Chequeo de la calidad en un Laboratorio Clínico 

1.5.1. Contexto legal de la calidad en sanidad 
1.5.2. Funciones del personal como garantía de calidad 
1.5.3. Inspecciones sanitarias 

1.5.3.1. Concepto 
1.5.3.2. Tipos de inspecciones 

1.5.3.2.1. Estudios 
1.5.3.2.2. Instalaciones 
1.5.3.2.3. Procesos 

1.5.4. Auditorias de datos clínicos 

1.5.4.1. Concepto de una auditoría 
1.5.4.2. Acreditaciones ISO 

1.5.4.2.1. Laboratorio: ISO 15189, ISO 17025 
1.5.4.2.2. ISO 17020, ISO 22870 

1.5.4.3. Certificaciones 

1.6. Evaluación de la calidad analítica: indicadores clínicos 

1.6.1. Descripción del sistema 
1.6.2. Flowchart del trabajo 
1.6.3. Importancia de la calidad del laboratorio 
1.6.4. Gestión de los procedimientos en los análisis clínicos 

1.6.4.1. Control de calidad 
1.6.4.2. Extracción y manejo de muestras 
1.6.4.3. Verificación y validación en los métodos 

1.7. Niveles de decisión clínica dentro de unos intervalos de referencia 

1.7.1. Analíticas de laboratorio clínico 

1.7.1.1. Concepto 
1.7.1.2. Parámetros clínicos estándar 

1.7.2. Intervalos de referencia 

1.7.2.1. Rangos de laboratorio. Unidades Internacionales 
1.7.2.2. Guía de validación de métodos analíticos  

1.7.3. Niveles de decisión clínica 
1.7.4. Sensibilidad y especificidad de los resultados clínicos 
1.7.5. Valores críticos. Variabilidad 

1.8. Procesamiento de las peticiones de pruebas clínicas 

1.8.1. Tipos de peticiones más comunes 
1.8.2. Uso eficiente vs. Demanda en exceso 
1.8.3. Ejemplo práctico de peticiones en el ámbito hospitalario 

1.9. El método científico en los Análisis Clínicos 

1.9.1. Pregunta PICO 
1.9.2. Protocolo 
1.9.3. Búsqueda bibliográfica 
1.9.4. Diseño de estudio 
1.9.5. Obtención de datos 
1.9.6. Análisis estadístico e interpretación de resultados 
1.9.7. Publicación de resultados 

1.10. Medicina basada en la Evidencia Científica. Aplicación en los Análisis Clínicos 

1.10.1. Concepto de evidencia científica 
1.10.2. Clasificación de los niveles de evidencia científica 
1.10.3. Guías de Práctica Clínica Habitual 
1.10.4. Evidencia aplicada a los análisis clínicos. Magnitud del beneficio

Módulo 2. Técnicas Instrumentales en el Laboratorio de Análisis Clínicos 

2.1. Técnicas instrumentales en análisis clínico 

2.1.1. Introducción  
2.1.2. Conceptos Fundamentales  
2.1.3. Clasificación de los métodos instrumentales  

2.1.3.1. Métodos clásicos  
2.1.3.2. Métodos Instrumentales  

2.1.4. Preparación de reactivos, disoluciones, tampones y controles 
2.1.5. Calibración de los equipos  

2.1.5.1. Importancia de la calibración 
2.1.5.2. Métodos de calibración  

2.1.6. Proceso de análisis clínico  

2.1.6.1. Razones para solicitar un análisis clínico  
2.1.6.2. Fases que comprenden el proceso de análisis  
2.1.6.3. Preparación del paciente y obtención de las muestras  

2.2. Técnicas microscópicas en análisis clínicos 

2.2.1. Introducción y conceptos 
2.2.2. Tipo de microscopios 

2.2.2.1. Microscopios ópticos 
2.2.2.2. Microscopios electrónicos 

2.2.3. Lentes, luz y formación de la imagen 
2.2.4. Manejo y mantenimiento del microscopio de luz visible 

2.2.4.1. Manejo y propiedades 
2.2.4.2. Mantenimiento  
2.2.4.3. Incidencias en la observación 
2.2.4.4. Aplicación en Análisis Clínico  

2.2.5. Otros microscopios. Características y manejo  

2.2.5.1. Microscopio campo oscuro 
2.2.5.2. Microscopio luz polarizada  
2.2.5.3. Microscopio interferencia  
2.2.5.4. Microscopio invertido  
2.2.5.5. Microscopio de luz ultravioleta  
2.2.5.6. Microscopio de fluorescencia 
2.2.5.7. Microscopio electrónico  

2.3. Técnicas microbiológicas en Análisis Clínico 

2.3.1. Introducción y concepto 
2.3.2. Diseño y normas de trabajo del laboratorio de microbiología clínico  

2.3.2.1. Normas y recursos necesarios 
2.3.2.2. Rutinas y procedimiento en el laboratorio  
2.3.2.3. Esterilidad y contaminación  

2.3.3. Técnicas de cultivo celular 

2.3.3.1. Medios de cultivo  

2.3.4. Procedimientos de extensión y tinción más utilizados en Microbiología Clínica 

2.3.4.1. Reconocimiento de bacterias 
2.3.4.2. Citológicas 
2.3.4.3. Otros procedimientos 

2.3.5. Otros métodos de análisis microbiológico  

2.3.5.1. Examen microscópico directo. Identificación flora habitual y patogénica
2.3.5.2. Identificación mediante pruebas bioquímicas 
2.3.5.3. Test inmunológicos rápidos 

2.4. Técnicas volumétricas, gravimétricas, electroquímicas y valoraciones 

2.4.1. Volumetría. Introducción y concepto 

2.4.1.1. Clasificación de los métodos  
2.4.1.2. Procedimiento de laboratorio para realizar una volumetría  

2.4.2. Gravimetría  

2.4.2.1. Introducción y concepto 
2.4.2.2. Clasificación de los métodos gravimétricos 
2.4.2.3. Procedimiento de laboratorio para realizar una gravimetría  

2.4.3. Técnicas electroquímicas  

2.4.3.1. Introducción y concepto  
2.4.3.2. Potenciometría  
2.4.3.3. Amperometría 
2.4.3.4. Culombimetría 
2.4.3.5. Conductimetría  
2.4.3.6. Aplicaciones en análisis clínico  

2.4.4. Valoraciones 

2.4.4.1. Ácido-base 
2.4.4.2. Precipitación  
2.4.4.3. Formación de complejo  
2.4.4.4. Aplicaciones en análisis clínico  

2.5. Técnicas espectrales en análisis clínico 

2.5.1. Introducción y conceptos  

2.5.1.1. Radiación electromagnética y su interacción con la materia 
2.5.1.2. Absorción y emisión de la radiación  

2.5.2. Espectrofotometría. Aplicación en análisis clínico 

2.5.2.1. Instrumentación  
2.5.2.2. Procedimiento   

2.5.3. Espectrofotometría de absorción atómica  
2.5.4. Fotometría de emisión en llama  
2.5.5. Fluorimetría  
2.5.6. Nefelometría y turbidimetría  
2.5.7. Espectrometría de masas y de reflectancia 

2.5.7.1. Instrumentación  
2.5.7.2. Procedimiento 

2.5.8. Aplicaciones de las técnicas espectrales más usadas actualmente en análisis clínico  

2.6. Técnicas de inmunoanálisis en análisis clínico  

2.6.1. Introducción y conceptos  

2.6.1.1. Conceptos inmunología  
2.6.1.2. Tipos de inmunoanálisis 
2.6.1.3. Reactividad cruzada y antígeno 
2.6.1.4. Moléculas de detección  
2.6.1.5. Cuantificación y sensibilidad análitica 

2.6.2. Técnicas inmunohistoquímicas  

2.6.2.1. Concepto 
2.6.2.2. Procedimiento inmunohistoquímica  

2.6.3. Técnica enzima inmunohistoquímica 

2.6.3.1. Concepto y procedimiento 

2.6.4. Inmunofluorescencia 

2.6.4.1. Conceptos y clasificación  
2.6.4.2. Procedimiento inmunofluorescencia 

2.6.5. Otros métodos de inmunoanálisis  

2.6.5.1. Inmunofelometría 
2.6.5.2. Inmunodifusión radial  
2.6.5.3. Inmunoturbidimetría 

2.7. Técnicas de separación en análisis clínico. Cromatografía y Electroforesis  

2.7.1. Introducción y conceptos 
2.7.2. Técnicas cromatográficas 

2.7.2.1. Principios, conceptos y clasificación 
2.7.2.2. Cromatografía de gas-líquido. Conceptos y procedimiento
2.7.2.3. Cromatografía líquida de alta eficacia. Conceptos y procedimiento 
2.7.2.4. Cromatografía en capa fina 
2.7.2.5. Aplicaciones en análisis clínico 

2.7.3. Técnicas electroforéticas  

2.7.3.1. Introducción y conceptos  
2.7.3.2. Instrumentación y procedimiento 
2.7.3.3. Objeto y campo de aplicación en Análisis Clínico  
2.7.3.4. Electroforesis capilar  

2.7.3.4.1. Electroforesis de proteína en suero 

2.7.4. Técnicas híbridas: ICP masas, Gases masas y Líquidos masas 

2.8. Técnicas de biología molecular en análisis clínico 

2.8.1. Introducción y conceptos 
2.8.2. Técnica de extracción de DNA y RNA 

2.8.2.1. Procedimiento y conservación  

2.8.3. Reacción en cadena de la polimerasa PCR 

2.8.3.1. Concepto y fundamento 
2.8.3.2. Instrumentación y procedimientos 
2.8.3.3. Modificaciones del método de PCR 

2.8.4. Técnicas de hibridación 
2.8.5. Secuenciación 
2.8.6. Análisis de proteínas mediante transferencia tipo Western  
2.8.7. Proteómica y genómica 

2.8.7.1. Conceptos y procedimientos en análisis clínico 
2.8.7.2. Tipos de estudios en proteómica 
2.8.7.3. Bioinformática y protéomica  
2.8.7.4. Metabolómica 
2.8.7.5. Relevancia en Biomedicina  

2.9. Técnicas de determinación de elementos formes. Citometría de flujo. Análisis en la cabecera del paciente

2.9.1. Recuentode los hematíes  

2.9.1.1. Conteo celular. Procedimiento
2.9.1.2. Patologías diagnósticadas con esta metodología  

2.9.2. Recuento de los leucocitos 

2.9.2.1. Procedimiento  
2.9.2.2. Patologías diagnosticadas con esta metodología 

2.9.3. Citometría de flujo 

2.9.3.1. Introducción y conceptos 
2.9.3.2. Procedimiento de la técnica  
2.9.3.3. Aplicaciones de la citometría en Análisis Clínico

2.9.3.3.1. Aplicaciones en Oncohematología 
2.9.3.3.2. Aplicaciones en Alergia 
2.9.3.3.3. Aplicaciones en Infertilidad 

2.9.4. Análisis a la cabecera del paciente 

2.9.4.1. Concepto 
2.9.4.2. Tipos de muestras 
2.9.4.3. Técnicas usadas 
2.9.4.4. Aplicaciones más usadas de los análisis a la cabecera del paciente 

2.10. Interpretación de resultados, evaluación de métodos analíticos e interferencias analíticas

2.10.1. Informe de laboratorio 

2.10.1.1. Concepto  
2.10.1.2. Elementos característicos del informe de laboratorio 
2.10.1.3. Interpretación del informe 

2.10.2. Evaluación de métodos analíticos en análisis clínico

2.10.2.1. Conceptos y objetivos 
2.10.2.2. Linealidad 
2.10.2.3. Veracidad 
2.10.2.4. Precisión 

2.10.3. Interferencias analíticas 

2.10.3.1. Concepto, fundamento y clasificación 
2.10.3.2. Interferentes Endógenos 
2.10.3.3. Interferentes exógenos 
2.10.3.4. Procedimientos para detectar y cuantificar una interferencia en un método o análisis específico 

Módulo 3. Bioquímica IV 

3.1. Estudio de la Fertilidad e Infertilidad humanas 

3.1.1. Problemas ginecológicos más frecuentes 

3.1.1.1. Malformaciones del aparato reproductor 
3.1.1.2. Endometriosis 
3.1.1.3. Ovarios poliquísticos 
3.1.1.4. Concentración de FSH sérica 

3.1.2. Problemas andrológicos más comunes 

3.1.2.1. Alteración de la calidad seminal 
3.1.2.2. Eyaculación retrógrada 
3.1.2.3. Lesiones neurológicas 
3.1.2.4. Concentración de FSH 

3.2. Técnicas de Reproducción Asistida actuales 

3.2.1. Inseminación Artificial o IA 
3.2.2. IAC 
3.2.3. IAD 
3.2.4. Punción ovárica 
3.2.5. Fecundación in vitro e Inyección intracitoplasmática de espermatozoides 
3.2.6. Transferencia de gametos 

3.3. Técnicas de conservación de gametos en el laboratorio de urología. Banco de donaciones de gametos 

3.3.1. Marco legal actual 
3.3.2. Principios de la criopreservación celular 
3.3.3. Protocolo de congelación/descongelación de ovocitos 
3.3.4. Protocolo de congelación/descongelación de semen 
3.3.5. Banco de donaciones de gametos 

3.3.5.1. Concepto y finalidad en la reproducción asistida 
3.3.5.2. Características de un donante 

3.4. Estudio de la embriología y de la andrología en el Laboratorio Clínico 

3.4.1. Cultivo de pre-embriones y de espermatozoides 
3.4.2. Etapas embrionarias  
3.4.3. Técnicas de estudio seminal 

3.4.3.1. Seminograma 
3.4.3.2. Lavado seminal 

3.5. Técnicas de laboratorio para el estudio del crecimiento, senescencia y apoptosis celular 

3.5.1. Estudio del crecimiento celular 

3.5.1.1. Concepto 
3.5.1.2. Parámetros condicionantes del crecimiento celular 

3.5.1.2.1. Viabilidad 
3.5.1.2.2. Multiplicación 
3.5.1.2.3. Temperatura 
3.5.1.2.4. Agentes externos 

3.5.1.3. Aplicaciones prácticas en los Análisis Clínicos 

3.5.2. Estudio de la senescencia y apoptosis celular 

3.5.2.1. Concepto de la senescencia  

3.5.3. Tinción de Hematoxilina/Eosina 
3.5.4. Aplicación clínica del estrés oxidativo 

3.6. Análisis de fluidos corporales  

3.6.1. Líquido amniótico 
3.6.2. Saliva. Nasofaríngeas 
3.6.3. LCR 
3.6.4. Líquido sinovial 
3.6.5. Pleural 
3.6.6. Pericárdico 
3.6.7. Peritoneal 

3.7. Estudio de la orina en el laboratorio de urología y de anatomía patológica 

3.7.1. Uroanálisis sistemático 
3.7.2. Urocultivo 
3.7.3. Citología de Anatomía Patológica 

3.8. Estudio clínico de las heces  

3.8.1. Estudio físico 
3.8.2. Sangre oculta en heces 
3.8.3. Estudio en fresco 
3.8.4. Coprocultivo 

3.9. Estudio molecular del cáncer. Marcadores tumorales más comunes 

3.9.1. PSA 
3.9.2. EGFR 
3.9.3. Gen HER2 
3.9.4. CD20 
3.9.5. Enolasa neuronal específica NSE 
3.9.6. FAP 
3.9.7. Gen ALK 
3.9.8. Gen ROS1 
3.9.9. Mutación BRAFV600 

3.10. Monitoreo terapéutico de fármacos. Farmacocinética 

3.10.1. Concepto 
3.10.2. Parámetros de estudio 

3.10.2.1. Absorción 
3.10.2.2. Distribución 
3.10.2.3. Eliminación 

3.10.3. Aplicaciones clínicas de la farmacocinética 

Módulo 4. Microbiología y Parasitología 

4.1. Conceptos generales en Microbiología 

4.1.1. Estructura de los microorganismos 
4.1.2. Nutrición, metabolismo y crecimiento microbiano 
4.1.3. Taxonomía microbiana 
4.1.4. Genómica y Genética microbianas 

4.2. Estudio de infecciones bacterianas 

4.2.1. Cocos Gram positivo 
4.2.2. Cocos Gram negativo 
4.2.3. Bacilos Gram positivo 
4.2.4. Bacilos Gram negativo 
4.2.5. Otras bacterias de interés clínico 

4.2.5.1. Legionella pneumophila 
4.2.5.2. Micobacterias 

4.3. Técnicas generales en Microbiología 

4.3.1. Procesamiento de muestras microbiológicas 
4.3.2. Tipos de muestras microbiológicas 
4.3.3. Técnicas de siembra 
4.3.4. Tipos de tinciones en Microbiología 
4.3.5. Técnicas actuales de identificación de microorganismos 

4.3.5.1. Pruebas bioquímicas 
4.3.5.2. Sistemas comerciales manuales o automáticos y galerías multipruebas 
4.3.5.3. Espectrometría de masas MALDI TOF 
4.3.5.4. Pruebas moleculares

4.3.5.4.1. ARNr 16S 
4.3.5.4.2. ARNr 16S-23S 
4.3.5.4.3. ARNr 23S 
4.3.5.4.4. Gen rpoB 
4.3.5.4.5. Gen gyrB 

4.3.5.5. Diagnóstico serológico de infecciones microbianas 

4.4. Pruebas de sensibilidad antimicrobiana 

4.4.1. Mecanismos de resistencia a antimicrobianos 
4.4.2. Test de sensibilidad 
4.4.3. Antibacterianos 

4.5. Estudio de infecciones virales

4.5.1. Principios básicos en Virología 
4.5.2. Taxonomía 
4.5.3. Virus con afectación al sistema respiratorio 
4.5.4. Virus con afectación al sistema digestivo 
4.5.5. Virus con afectación al sistema nervioso central 
4.5.6. Virus con afectación al sistema reproductivo 
4.5.7. Virus sistémicos 

4.6. Técnicas generales en Virología 

4.6.1. Procesamiento de muestras 
4.6.2. Técnicas de laboratorio para el diagnóstico vírico 
4.6.3. Antivirales 

4.7. Infecciones fúngicas más comunes

4.7.1. Generalidades sobre los hongos 
4.7.2. Taxonomía 
4.7.3. Micosis primarias 
4.7.4. Micosis oportunistas 
4.7.5. Micosis subcutáneas 
4.7.6. Micosis cutáneas y superficiales 
4.7.7. Micosis de etiología atípica 

4.8. Técnicas de diagnóstico en Micología Clínica 

4.8.1. Procesamiento de muestras 
4.8.2. Estudio de micosis superficiales 
4.8.3. Estudio de micosis subcutáneas 
4.8.4. Estudio de micosis profundas 
4.8.5. Estudio de micosis oportunistas 
4.8.6. Técnicas diagnósticas 
4.8.7. Antifúngicos 

4.9. Enfermedades parasitarias 

4.9.1. Conceptos generales en Parasitología 
4.9.2. Protozoos 

4.9.2.1. Amebas (Sarcodina) 
4.9.2.2. Ciliados (Ciliophora) 
4.9.2.3. Flagelados (Mastigophora) 
4.9.2.4. Apicomplexa 
4.9.2.5. Plasmodium 
4.9.2.6. Sarcocystis 
4.9.2.7. Microsporidios 

4.9.3. Helmintos 

4.9.3.1. Nemátodos 
4.9.3.2. Platelmintos 

4.9.3.2.1. Céstodos 
4.9.3.2.2. Tremátodos 

4.9.4. Artrópodos 

4.10. Técnicas de diagnóstico en Parasitología Clínica 

4.10.1. Procesamiento de muestras 
4.10.2. Métodos de diagnóstico 
4.10.3. Antiparasitarios

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